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¿Qué insecto es este? (India)

¿Qué insecto es este? (India)


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¿Alguien puede decirme qué tipo de insecto (si es uno) es este… !! ¿O es la crisálida de algún insecto?

Bueno, no creo que todo lo grande sea el insecto en sí, parece ser solo una especie de protección o refugio que se mueve junto con la pequeña cosa que sigue saliendo y moviéndose para moverse.

Ubicación: India


Esto es principalmente una conjetura y una sugerencia imprecisa, ya que la imagen no es muy clara (necesitaría ver las larvas con más detalle). Sin embargo, las polillas Bagworm (Psychidae), las polillas Case (Coleophoridae) y las larvas Caddisfly (Trichoptera, casi exclusivamente acuáticas) generan casos similares. Construyen sus cajas de seda y, a menudo, incluyen escombros, guijarros y otros materiales. No me sorprendería que las larvas de su imagen pertenezcan a uno de los dos primeros taxones. Las polillas Bagworm y Caddisflies generalmente incluyen muchos materiales externos en sus cajas larvarias, lo que podría indicar polillas Case para su espécimen (que parece tener una caja más débil hecha principalmente de seda).

Aquí hay dos imágenes de la primera larva de una polilla del caso del Reino Unido (Coleophora deauratella) seguido de una polilla Bagworm (Dahlica triquetrella), al igual que las comparaciones. Si realiza búsquedas de imágenes en Google de "nombre de grupo + larvas", verá muchos ejemplos de cómo pueden verse.

Y solo como un ejemplo genial: las larvas a menudo usan material aleatorio para construir sus cajas, lo que puede dar el siguiente resultado, si las larvas de la mosca caddis se crían en un tanque que contiene piezas de oro y perlas. Para obtener más información, consulte este enlace.


Es un portador de casos doméstico, una especie de larva de polilla de la familia Tineidae que construye este caso a su alrededor.

@fileunderwater es incorrecto


Entomofagia

Entomofagia (/ ˌ ɛ n t ə ˈ m ɒ f ə dʒ i /, del griego ἔντομον éntomon, 'insecto' y φαγεῖν fageína, 'comer') describe un comportamiento de alimentación que incluye insectos. Aparte de las criaturas no humanas, el término también puede referirse a la práctica de comiendo insectos entre los humanos.


Principales plagas de insectos que atacan a los árboles de banano en la India y su control

Una de las frutas más antiguas que conoce la humanidad es el banano o el plátano. Pertenecen al género Musa. Varias especies de este género (Musa chinensis, M. paradisiaca, M. sapientum) se encuentran en diferentes partes de India, Birmania, China, Tailandia, etc. El banano también se cultiva en partes tropicales de África, América, Australia y Filipinas. En la India, el cultivo del banano comenzó en el año 600 a. C.

Las condiciones tropicales son las más adecuadas para el crecimiento del banano. En la India, los principales estados productores de banano son Kerala, Tamil Nadu, Maharashtra, Gujrat y Assam. El plátano maduro contiene una buena cantidad de carbohidratos y una buena cantidad de calcio, fósforo y hierro, también contiene una cantidad apreciable de vitamina C y minerales. El plátano se considera un alimento productor de energía, el plátano verde se utiliza para cocinar y extraer cerveza.

Se han reportado diferentes plagas de insectos de diferentes partes del mundo que son destructivas para el cultivo de banano. Sin embargo, en la India, solo unas pocas plagas realmente causan daños graves al banano.

1. Cosmoplites Sordidus, Germere (el gorgojo del plátano):

Se encuentra en todos los países productores de banano del mundo, pero no se ha informado en Egipto, Israel y Hawai. En la India, se encuentra en todo el país, especialmente en Tamil Nadu, Kerala, Karnataka, Maharashtra, Gujrat, Punjab, Rajasthan, Bihar, Orissa, Bengala Occidental, Uttar Pradesh y Andhra Pradesh.

Es una de las plagas más destructivas del banano. Tanto los adultos como las larvas causan daños al banano. El adulto se alimenta de los pseudo tallos y larvas del rizoma (la parte aérea visible del plátano es un pseudo tallo que es una extensión de la parte subterránea, el rizoma).

El pseudo tallo queda plagado de agujeros mientras que el punto de crecimiento del rizoma se destruye, lo que resulta en un marchitamiento prematuro y una falla en la aparición de nuevos retoños (brotes), respectivamente. La planta superviviente produce frutos de tamaño insuficiente. Los túneles que hacen los gorgojos están ocupados por bacterias y hongos, lo que acelera el proceso de pudrición.

Marcas de identificación:

El gorgojo adulto de constitución robusta mide entre 10 y 13 mm de largo. El cuerpo es de color negro o marrón rojizo con el hocico arterialmente alargado y ligeramente curvado. Los élitros cortos están estriados longitudinalmente.

La oviposición se produce durante todo el año. Los huevos se ponen individualmente en la parte expuesta (collar) o en la parte subterránea del rizoma. La hembra hace pequeñas madrigueras extrayendo los tejidos o dentro de la vaina de la hoja. El huevo se convierte en larva en 5 a 8 días.

La larva es apodus (sin patas), amarillenta, carnosa, fusiforme con cabeza rojiza. El cuerpo mide de 8 a 12 mm de largo. Se perfora en el rizoma y hace túneles dentro de él, alimentándose de los tejidos del rizoma.

La vida de las larvas dura unos 25 días, después de que se produce la pupa dentro de los túneles formados por las larvas cerca de la superficie exterior del rizoma. La pupación dura de 5 a 6 días. La pupación también puede ocurrir en el suelo. El adulto emerge de la pupa y se esconde en la vaina foliar del pseudo tallo, alimentándose de sus tejidos internos. Los adultos generalmente se alimentan durante la noche. Sobreviven de uno a dos años y pueden permanecer sin comida durante seis meses.

Control:

1. El cultivo limpio ayuda a reducir la población de gorgojos.

2. Los chupones infestados deben ser desarraigados y destruidos.

3. Chupones no infectados que se utilizarán para la plantación.

4. La porción cortada del pseudo tallo después de la remoción de la fruta debe cubrirse con una capa de tierra.

5. En el momento de la siembra, los hoyos deben tratarse con polvo de BHC al 5% a 60-80 g por hoyo.

Rociar alrededor del cuello con Fenitrotión (0,1%) o dieldrín al 0,05% o endosulfán al 0,05%, fosfamidón al 0,05%, clorpirifos al 0,05%, etc.

2. Odoiporoxjs l ongicollis, Olivier:

(El barrenador del tallo del plátano)

Es una plaga grave del banano reportada en países como India, Birmania, Sri Lanka, Bangladesh e Indonesia. En la India, es más frecuente en estados como Bihar, Bengala Occidental y Assam (noreste de la India).

Las larvas son más destructivas. Después de la eclosión, las larvas se alimentan de los tejidos de la vaina de la hoja y luego se abren camino hacia el pseudo tallo.

Una gran cantidad de larvas entra en una sola planta, debilitando el pseudo tallo que comienza a pudrirse y finalmente el árbol se rompe cuando se enfrenta a un fuerte viento. Los insectos adultos también se alimentan de los tejidos de la vaina de las hojas, especialmente los en descomposición.

Marcas de identificación:

Los adultos son gorgojos robustos, de color marrón rojizo o negro, que miden de 1,3 a 2 cm de longitud.

El macho y la hembra adultos después de la emergencia se aparean fuera del árbol o dentro de la vaina de la hoja. El período de preoviposición dura de 28 a 30 días. La plaga se reproduce durante todo el año, pero permanece más activa durante los meses de verano y monzón.

La hembra, por su tribuna, hace una hendidura en la vaina de la pierna y empuja los huevos dentro de las cámaras de aire. Se pone un solo huevo en una cámara. Los huevos son cilíndricos, de color blanco amarillento, miden 2 x 1 mm. Los huevos eclosionan en 3 a 5 días en verano y de 5 a 8 días en invierno. La larva no tiene patas (apodus), de cuerpo blando, carnosa, arrugada y cubierta de pelos castaños.

La vida de las larvas es de unos 26 días en verano y 68 días en invierno. Hay cinco estadios larvarios. La larva perfora el pseudo tallo haciendo túneles dentro de él. Esto provoca el debilitamiento y la descomposición de la parte afectada.

El capullo de larvas completamente desarrollado enrollando materiales fibrosos cortos de la vaina de la hoja a su alrededor. Pupa dentro del túnel cerca de la periferia del pseudo tallo. El período de pupa dura de 20 a 24 días en verano y de 37 a 44 días en invierno. El adulto se alimenta de la parte interna de la vaina foliar y de los tejidos en descomposición. Vive unos dos años.

1. Desarraigo y quema de planta infestada.

2. La limpieza y el saneamiento mejorado del campo reducen la población de plagas.

3. La inserción de tabletas de fosfato de alminio en las regiones basales gruesas de los pseudotallos a 1,5 g por cada pseudotallo (como sugieren Dutt y Maiti, 1972) previene el ataque de plagas.

La pulverización periódica de carbarilo (0,2%) o endosulfán (0,05%) mantiene la población de la plaga bajo control.


Principales plagas de insectos que atacan a los árboles de guayaba en la India y su control

La guayaba (Psidium guajava) es una fruta común de subcontenido indio. Es un nativo de América tropical. En la India, se introdujo en el siglo XVII y ahora es una fruta casera, especialmente en Uttar Pradesh y Bihar.

La fruta se come cruda. Las frutas inmaduras no son comestibles, sin embargo, las personas de diferentes grupos de edad disfrutan de las frutas maduras y maduras. El jugo de guayaba se usa para hacer mermelada, jalea, mantequilla de frutas y jarabe de azúcar.

Mediante injerto e hibridación se han desarrollado diferentes variedades de guayaba. Los árboles de guayaba son resistentes, ya que pueden soportar corrientes de aire y tolerar diferentes condiciones del suelo. La guayaba contiene una buena cantidad de carbohidratos, fósforo, calcio y hierro. La fruta es muy rica en vitamina C y vitamina A. Se han observado más de 80 especies de insectos que, de una forma u otra, afectan la calidad y el rendimiento de la guayaba sin embargo pocas de ellas causan daños graves.

1. Dacus (= bactrocera) dorsalis hendel:

Dacus dorsalis es una plaga importante de la guayaba y el mango. También infesta chiles de berenjena, albaricoque, sapota, berza, etc. Esta plaga se encuentra en toda la India.

Tanto los adultos como los gusanos causan daños a la fruta. Los gusanos destruyen la pulpa que a su vez se decolora y produce un olor nauseabundo. Aparecen manchas marrones podridas en la fruta atacada que eventualmente se cae. El adulto se alimenta de exudaciones de fruta madura. El pinchazo producido por la hembra en la superficie de la fruta para la puesta de huevos deja paso a los microorganismos tímidos a entrar en el interior de la fruta.

Marcas de identificación:

El insecto es de color marrón claro con alas transparentes y patas amarillas. 1 La mosca de la fruta es un poco más grande que la mosca doméstica y es de constitución robusta.

La hembra puso huevos sobre la piel suave de los frutos maduros. Los huevos se insertan debajo de la cáscara de los frutos. Las moscas adultas emergen en el mes de abril y comienzan a poner huevos. El proceso de puesta de huevos continúa durante unos cuatro meses, es decir, hasta julio. Los huevos se ponen en racimos de 2 & # 8211 15 sobre los frutos hospedadores. Durante el período adulto de cuatro meses, una hembra puso de 600 a 800 huevos.

Los gusanos que emergen de los huevos se alimentan de la pulpa madura de la fruta. La vida de las larvas dura de 6 a 44 días. El gusano maduro sale de la fruta y cae al suelo para formar una pupa. La formación de pupas ocurre de 4 a 6 pulgadas debajo de la superficie en el suelo. La vida de la pupa dura de 6 a 29 días. El adulto emerge de la pupa. Son buenos voladores.

Control:

1. Las frutas caídas e infestadas deben recolectarse y enterrarse profundamente en el suelo.

2. Arar alrededor de los árboles para exponer a las pupas a ser destruidas por el calor y los depredadores.

1. Las moscas adultas se pueden atrapar y matar mediante cebos venenosos o pulverizadores de cebo (20 ml de malatión + 200 g de melaza en 20 litros de agua).

2. Los setos alrededor de los guayabos se pueden rociar con endosulfán (0,1%), carbarilo (0,1%) o quinalfos (0,05%).

2. Indarbela tetraonis moore:

(Orugas que comen corteza / El brote y el barrenador de la corteza)

Es una plaga común de la guayaba y se distribuye ampliamente por todo el subcontinente indio. Aunque esta plaga se encuentra en varias partes de la India como Bihar, Orissa, Haryana, Rajasthan, Madhya Pradesh, Maharashtra, Andhra Pradesh y Tamil Nadu, es más común y destructiva en los árboles de guayaba, especialmente en Punjab, Uttar Pradesh y el sur de la India.

Además de la guayaba, el insecto también infecta plantas de mango, litchi, falsa, jamun, jack-fruit, granada, berza y ​​cítricos. El daño es causado por las orugas. La oruga perfora la corteza y el tallo a una profundidad de 15 a 25 μm y se alimenta de los tejidos de la corteza. Los tejidos conductores se destruyen afectando el crecimiento del árbol y la producción de frutos.

La oruga permanece oculta en el pozo durante el día. Por la noche sale y se alimenta de la corteza del árbol. La larva cubre el pozo y el área circundante con una tela de seda, que brinda protección y refugio a la plaga mientras se alimenta. Una sola larva habita en un pozo, sin embargo, puede haber entre 15 y 30 larvas en un solo árbol. Agujeros en la superficie del tallo y galerías sedosas llenas de materia fecal y excrementos indican la presencia de la plaga.

Marcas de identificación:

El insecto adulto es una polilla corta y robusta de color marrón pálido. Las alas delanteras tienen marcas verticales de color marrón oscuro, mientras que las alas traseras son de color blanco grisáceo. La envergadura de las alas es de 46 a 50 mm en el caso de las mujeres y de 35 a 38 mm en el caso de los hombres.

La puesta de huevos comienza de abril a junio. La hembra puso huevos en cortes y hendiduras en la corteza del árbol huésped en grupos de 15 a 25. En 8 a 10 días, las larvas eclosionan de los huevos.

Porque a veces la larva se alimenta de la corteza. Forman astillas ribbion y producen hilos sedosos en la superficie de la corteza. La larva más avanzada perfora la madera haciendo pequeños túneles en el tallo. Durante el día la larva permanece dentro del túnel, pero por la noche sale a alimentarse de la corteza.

Una larva completamente desarrollada es de color marrón sucio y mide de 38 a 45 mm de largo. La vida de las larvas dura de 10 a 11 meses. Después de eso, la larva pupa dentro de las galerías durante marzo - abril. El período de pupa dura de 15 a 25 días. El adulto emerge de la pupa. Hay una sola generación en un año.

1. Los excrementos y las materias fecales junto con una cinta como una tela de seda se deben quitar de la corteza y la quemadura, de modo que se destruyan las orugas escondidas debajo de ellos.

2. Se puede introducir agua caliente en el orificio mediante una jeringa.

1. Después de eliminar los excrementos y la materia fecal de la corteza de los árboles, se debe rociar una emulsión de quinalfos al 0,1% o clorpirifos al 0,05%.

2. La inyección de enderina (0.04%) o BHC (0.2%) o DDT (0.5%) y endosulfán (0.05%) en el agujero puede matar la larva presente dentro del tallo.

3. En los orificios de la corteza de los árboles se debe introducir algodón empapado en sulfuro de carbono, cloroformo o gasolina. A continuación, se puede cubrir la abertura del agujero con barro.


Importancia económica de los insectos

Los insectos que producen miel, cera, laca, tintes y seda son comercialmente beneficiosos. Algunos insectos son muy útiles para destruir insectos dañinos.

1. Productos comerciales:

Apis, las abejas producen millones de toneladas de miel cada año, también les da cera de abejas de sus panales.

Los beneficios de las abejas son cosmopolitas, no solo en la producción de miel y cera, sino también en la polinización cruzada de muchas frutas y flores sin las cuales estas plantas no podrían existir. Tachardia, el insecto lac segrega laca comercial producida a partir de las glándulas tegumentarias como cubierta protectora por las hembras, la laca se fabrica a partir de laca en la India.

Dactylopius, el insecto cochinilla de México se encuentra en los cactus, los cuerpos secos de las hembras de este insecto escama se utilizan para hacer tintes de cochinilla. Bombyx y Eupterote son polillas de seda, se crían en India, China, Japón y Europa, sus larvas llamadas gusanos de seda hacen girar capullos de seda cruda, la fibra de seda se desenrolla y se usa para hacer seda.

En los países asiáticos se producen anualmente más de 25 millones de kilogramos de seda. Los élitros secos de dos escarabajos, Lytta y Mylabris, se utilizan para hacer cantaridina, un poderoso afrodisíaco.

Las larvas de dos moscas, Lucilla y Phormia, se utilizan para curar las heridas de los huesos que no responden a los medicamentos, las larvas se colocan en las heridas de los huesos y la médula ósea, eliminan los tejidos supurantes y muertos, previenen el crecimiento bacteriano y excretan alantoína. que cura las heridas.

2. Insectos depredadores útiles:

Algunos insectos son depredadores, se alimentan y destruyen una gran cantidad de insectos dañinos. Stagomantis, una mantis es voraz, se alimenta de moscas, saltamontes y orugas, algunas de las cuales son nocivas para los cultivos. Las larvas y los adultos de Chilomenes, una mariquita, se alimentan de pulgones que infectan las plantas de algodón.

Novius, una mariquita, destruye las lombrices que son plagas de los naranjos y limoneros. Epicauta es un escarabajo ampolla, deposita huevos donde ocurren las langostas, las larvas al nacer entran en las cápsulas de huevos de las langostas y se comen masas de huevos. Calasoma, un escarabajo terrestre se alimenta de muchos tipos de larvas lepidópteros que destruyen los cereales y el algodón.

3. Insectos parásitos beneficiosos:

Algunos insectos parasitan a los insectos dañinos, por lo general ponen huevos en los cuerpos de las larvas y los adultos de los insectos dañinos que las crías al nacer de los huevos finalmente matan a sus huéspedes. Las larvas de Tachina y moscas relacionadas son parásitos de larvas lepidópteros dañinos, tales como gusanos ejército que son dañinos para los cereales.

Las larvas de moscas himenópteros y avispas carnívoras devoran pulgones en grandes cantidades. Las moscas Chalcids e icneumon son parásitos, poniendo huevos en capullos y larvas de lepidópteros fitófagos. Apanteles, una mosca himenóptero pone huevos en gusanos ejército y gusanos de cápsula, las larvas parásitas roen su camino a través de la piel del huésped.

4. Carroñeros:

Algunos insectos son carroñeros, se comen la materia vegetal y animal muerta, por lo que previenen la descomposición. Algunas hormigas y larvas de algunas moscas pueden devorar cadáveres de animales enteros.

B. Insectos dañinos:

En comparación con los insectos beneficiosos, el número de insectos dañinos es muy grande.

1. Insectos transmisores de enfermedades:

Muchos tipos de mosquitos, moscas, pulgas, piojos e insectos transmiten enfermedades al hombre y a los animales domésticos, se han descrito anteriormente en insectos y enfermedades.

2. Insectos domésticos:

La comida humana se estropea con cucarachas, hormigas, moscas y gorgojos. Tinea, Teniola y Trichophaga son polillas de la ropa, ponen huevos en ropa abrigada, las larvas al eclosionar comen y destruyen la ropa, también se alimentan de pieles, alfombras y frutos secos. Anthrenus es un escarabajo de las alfombras, es un carroñero que se alimenta de materia animal en descomposición, pero sus larvas destruyen las alfombras y conservan los especímenes biológicos.

El tenebrio es el escarabajo del gusano de la harina, sus larvas son gusanos de la harina, comen harina, harina y granos almacenados, como el arroz. Lepisma, el pez plateado y Liposcelis, el piojo de los libros viven y destruyen libros y manuscritos antiguos. Las termitas, las hormigas blancas, causan una destrucción incalculable de libros, alfombras, muebles y carpintería de edificios.

3. Nocivo para los animales domésticos:

Glossina, la mosca tsetsé transmite Trypanosoma brucei, que causa nagana en los caballos. Tabanus y Stomoxys, las moscas chupadoras de sangre, inyectan Trypanosoma evansi en caballos y ganado, lo que causa surra en la India.

Las larvas de Hypoderma, la mosca del gorjeo perforan debajo de la piel de los bueyes y hacen agujeros para respirar, luego pasan por el esófago y nuevamente perforan la piel a los lados de la columna vertebral para formar hinchazones, no solo dañan la piel sino que también reducen el suministro de carne y leche.

Gasterophilus, la mosca-bot pone huevos en el pelo del caballo, las larvas entran al estómago en grandes cantidades. Melophagus, la garrapata de las ovejas e Hippobosca, la mosca del bosque del ganado vacuno y de los caballos, buscan sangre de sus huéspedes y a menudo provocan hemorragias. Menopón, el piojo de la gallina chupa sangre y provoca la destrucción de las aves.

4. Nocivo para los cultivos:

Muchos insectos dañan los árboles forestales, los cultivos agrícolas, las frutas y los cereales almacenados; el daño que causan anualmente asciende a millones de rupias.

El número de estos insectos es innumerable, en su mayoría son lepidópteros, coleópteros, dípteros y hemípteros. Euproctis, la polilla de la cola marrón y Lymantria, la polilla gitana son plagas graves de los árboles de sombra y follaje, sus larvas son una amenaza y destruyen los árboles del bosque. Myetiola, la mosca de Hesse es un mosquito de tamaño pequeño, sus larvas dañan las plantas de trigo.

Las larvas de dos Lepidoptera Chilo en la India y Diatraea en América perforan los tallos de la caña de azúcar y causan un gran daño. La pirilla, un saltador de hojas de caña de azúcar hemípteros, chupa el jugo de la caña de azúcar, tanto en la edad adulta como en la ninfa, provocando una gran pérdida de azúcar.

Pyrausta es una polilla que se encuentra en todo el mundo, pero especialmente abundante en los trópicos, sus larvas conocidas como barrenadores del maíz son conocidas por perforar los tallos y frutos del maíz (maíz). Nephotettix, el saltahojas del arroz indio y Leptocorisa, la plaga oriental del arroz y el mijo son Hemiptera, atacan el arroz en gran número comiéndose las hojas y las mazorcas.

Las larvas de Schoenobius, una polilla que perforan los tallos de las plantas de arroz en la India, matan las plantas. Las ninfas y los adultos de Hieroglyphus, un ortóptero, comen los brotes en crecimiento de las plantas de arroz, evitando así la formación de granos.

Dysdercus, el insecto del algodón indio, Oxycarenus, el insecto del algodón egipcio y Anthonomous el gorgojo del algodón son muy perjudiciales para el algodón, manchan y destruyen las cápsulas de algodón, Aphis, un hemípteros es una plaga grave del algodón en la India, las plagas a menudo atacan las plantas de algodón en grandes cantidades, lo que hace que las plantas se marchiten y mueran.

Las larvas de dos Lepidoptera, Agrotis y Gnorimoschema son gusanos cortadores de la papa en la India, el primero se alimenta de hojas de papa y corta los tallos, mientras que las larvas del segundo comen las papas en el campo y las tiendas, las larvas también atacan el tabaco y los tomates. . Las larvas de Agrotis también son destructivas para los guisantes, el repollo, el tabaco, las nueces molidas, el trigo y las coliflores.

Las larvas de algunos coleópteros se llaman gusanos de alambre, como Agriotis y Limonius, se alimentan de raíces y son extremadamente destructivas para los cereales, los cultivos de raíces y las gramíneas. Muchos insectos y sus larvas destruyen las verduras en la India.

Siphocoryne es un pulgón que se alimenta de hojas de repollo Anasa, la chinche de la calabaza es destructiva para las plantas cucurbitáceas Earias el gusano manchado destruye los bollitos Aulacophora, el escarabajo rojo se alimenta de calabazas las larvas de Bruchus, un escarabajo perfora las vainas de frijoles y guisantes matando la semilla .

Muchos insectos atacan los árboles frutales, dañan raíces, troncos, tallos, hojas, inflorescencias y frutos. Drosicha, un insecto harinoso causa la destrucción de mangos, ciruelas, papayas, frutos rojos, peras y cítricos en la India. Las ninfas y adultos de Ideocerus, un saltador de hojas de mango, atacan la inflorescencia y chupan la savia, por lo que causan un daño tremendo al evitar la formación de frutos de mango.

Las larvas de la mosca Contarinia se alimentan de peras jóvenes que pronto se pudren. Psylla, una chinche de la manzana, pone huevos en la manzana y el peral, las ninfas al nacer dañan la flor y disparan las larvas de Anthonomus, un escarabajo que también destruye las flores de la manzana y previene la formación de la fruta. Nysius, un error es muy destructivo para varios tipos de árboles frutales.

Muchas polillas, orugas y escarabajos causan un gran daño a los granos almacenados: dos escarabajos Tenebrio y Tribolium tienen hábitos similares y se encuentran comúnmente en tiendas y graneros, el primero se encuentra en todas las etapas en la harina, harina y productos almacenados, sus larvas se conocen como gusanos de la harina. Tribolium come trigo y granos almacenados. Calandra, un gorgojo perfora los granos de arroz y otros granos almacenados en la India.


Introducción

Los ecologistas han reconocido desde hace mucho tiempo el papel de los aportes de material vegetal e invertebrados derivados de la tierra a los arroyos; sin embargo, más recientemente la atención se ha centrado en el flujo de materiales y organismos en la dirección opuesta, de un arroyo a la tierra (Baxter et al., 2005, Sabo y Hoekman, 2015). La aparición de insectos acuáticos en forma aérea adulta representa un vínculo importante entre los arroyos y los hábitats ribereños adyacentes, lo que facilita el flujo de energía y nutrientes desde las redes alimentarias acuáticas a las terrestres. Los insectos acuáticos adultos son importantes subsidios alimentarios para una variedad de depredadores ribereños, incluidos lagartos, pájaros, murciélagos y arañas (Baxter et al., 2005). Algunas estimaciones indican que sólo alrededor del 3 por ciento de la biomasa de insectos acuáticos emergidos regresa al arroyo para poner huevos porque la mayoría se consume (Jackson y Fisher, 1986). El enfoque aquí está en un depredador específico, la araña, porque es relativamente fácil de observar e identificar. Se sabe que las poblaciones de varias arañas siguen de cerca la aparición de insectos acuáticos (Marzcak & amp Richardson, 2007). La familia Tetragnathidae, debido a su alta movilidad, puede aprovechar breves períodos de emergencia en áreas localizadas. De hecho, los conteos de arañas pueden ser un método útil para evaluar la integridad de los arroyos y la calidad del hábitat, y requieren menos mano de obra que otros métodos de muestreo que se enfocan en invertebrados o peces (Benjamin et al., 2011).

Presentamos una guía para una lección de campo y laboratorio basada en investigaciones para cursos de biología de pregrado en cualquier nivel. Los estudiantes deben tener una comprensión básica del método científico y una formación a nivel de biología de la escuela secundaria, pero con más detalles agregados, esta lección se puede utilizar para enseñar a los estudiantes sin conocimientos previos de los temas cubiertos. La atención se centra en los vínculos entre hábitats dentro de los ecosistemas, abordando específicamente la pregunta: ¿Cuál es el papel de la aparición de insectos en la conexión de hábitats y organismos acuáticos y terrestres? El desafío es cambiar la forma en que los estudiantes piensan sobre el entorno en el que vivimos: no como un rompecabezas organizado construido a partir de piezas discretas con límites definidos, sino como una sopa colorida, compuesta de múltiples capas de sabor y un sabor que se vuelve más definido a medida que pasa el tiempo. lo revuelves.


Las cigarras Brood X están emergiendo por fin

Kate Wong es editor senior de evolución y ecología en Científico americano.

Cherie Sinnen es un ilustrador independiente con sede en California.

En este mismo instante, en los patios traseros y los bosques del este de los EE. UU., Se está llevando a cabo uno de los espectáculos más grandes de la naturaleza y los rsquos. Aunque puede carecer de la majestuosidad épica de la migración de los ñus en el Serengeti o de la serena belleza de la temporada de los cerezos en flor en Japón, este evento no es menos impresionante. I & rsquom hablando sobre la aparición de las cigarras Brood X.

Cada 17 años, los miles de millones de componentes de Brood X suben desde sus guaridas subterráneas para pasar sus últimos días de fiesta bajo el sol. Esta generación se inició en 2004, cuando Facebook solo existía en la Universidad de Harvard y Amigos emitió su último episodio. Las ninfas de las cigarras recién nacidas cayeron de los árboles y se hundieron en la tierra. Han estado bajo tierra desde entonces, alimentándose de la savia de las raicillas de hierbas y árboles y madurando lentamente. Toda esa preparación ha estado conduciendo a este momento en el que emergen en manadas y mdash hasta 1.4 millones de cigarras por acre y mdash para mudar a su forma adulta, cantar su canción de amor ensordecedora y producir la próxima generación antes de morir solo unas semanas después.

Para los primeros colonos europeos en América del Norte, la aparición repentina de estos insectos en grandes cantidades les recordó las langostas de la infamia bíblica. Pero mientras que las langostas son saltamontes que forman enjambres gigantes y viajan largas distancias, devorando cultivos a una escala devastadora, las cigarras pertenecen a un orden de insectos completamente diferente. No forman enjambres y son malos voladores, por lo general viajan no más de varios cientos de pies. Además, representan una pequeña amenaza para las plantas porque no comen tejidos vegetales. Las hembras hacen incisiones en las ramitas para sus huevos, lo que puede debilitar los árboles jóvenes, pero no los árboles y arbustos maduros.

Existen casi 3.400 especies de cigarras en todo el mundo. Pero las cigarras periódicas que emergen en masa una vez cada 17 o 13 años son exclusivas del este de los EE. UU. Las cigarras de 17 años viven en el norte y las cigarras de 13 años se encuentran en el sur y el valle de Mississippi. Las tres especies de cigarras y mdash de 17 añosMagicicada septendecim, M. cassinii y M. septendeculaForman cohortes de especies mixtas llamadas crías cuyos miembros surgen como un reloj en el mismo horario. Las crías se identifican con números romanos. Brood X es la mayor de las 12 crías de cigarras de 17 años, que emergen en diferentes años.

Los ciclos de vida periódicos de estas cigarras, con sus largas fases de desarrollo y emergencias sincronizadas, han cautivado a los científicos durante mucho tiempo. La mayoría de las otras cigarras estudiadas hasta ahora tienen ciclos de vida de tres a cinco años, dice Chris Simon de la Universidad de Connecticut. Sus ninfas crecen a diferentes ritmos dependiendo de factores genéticos y ambientales, y realizan su salida del subsuelo una vez que alcanzan un cierto tamaño corporal y nivel de desarrollo. Como resultado, la descendencia de cualquier hembra sale en diferentes años, explica. Las cigarras periódicas, por el contrario, permanecen bajo tierra durante un período de tiempo fijo, independientemente de cuándo alcancen su tamaño completo, y luego emergen juntas.

Exactamente cómo las cigarras periódicas llegaron a tener estos patrones de historia de vida únicos es un área de investigación activa. Los análisis de ADN sugieren una línea de tiempo aproximada de su evolución. El último ancestro común de todos los vivos. Magicicada especies se ramificaron en dos linajes hace unos 3,9 millones de años durante la época del Plioceno. Una de estas ramas divergió 1,5 millones de años más tarde durante el Pleistoceno. Los tres linajes resultantes finalmente dieron lugar a las siete especies de cigarras de 13 y 17 años que viven en la actualidad. Se desconoce por qué estas cigarras se establecieron en horarios de 13 y 17 años. Una hipótesis sostiene que tener ciclos largos de números primos podría aumentar sus probabilidades de supervivencia al compensar su surgimiento de auges de población de depredadores que ocurren con más frecuencia y en ciclos de números compuestos. Pero las otras dos cigarras periódicas conocidas y mdashone en Fiji y la otra en India y mdashemergen a intervalos de ocho y cuatro años, respectivamente.

Los investigadores han propuesto que las cigarras periódicas evolucionaron a partir de las cigarras no periódicas intercambiando un programa de emergencia basado en el tamaño por uno basado en la edad y extendiendo el período de desarrollo. El cambio climático probablemente ayudó a impulsar este cambio. Las cigarras periódicas son sensibles a la temperatura y mdashit determina la duración de la temporada de crecimiento. Durante el Pleistoceno, las temperaturas de enfriamiento habrían ralentizado el desarrollo de los juveniles en promedio, pero aumentaron la variación en el período de crecimiento, haciendo que el momento de la emergencia de los adultos en las cigarras ancestrales sea aún más variable que antes. Con la reducción resultante en la densidad de cigarras adultas que emergen en un año determinado, las oportunidades de apareamiento habrían disminuido. En tales condiciones, cambiar de una estrategia de emergencia basada en el tamaño a una basada en la edad en la que los insectos permanecen bajo tierra durante mucho tiempo y luego emergen simultáneamente aumentaría la densidad de población adulta en la emergencia y, por lo tanto, sus oportunidades de encontrar parejas y reproducirse.

Emerger simultáneamente en grandes cantidades también abruma a los depredadores. En consecuencia, incluso después de que las aves, los mamíferos y los peces se hayan saciado de los insectos regordetes e indefensos, quedan muchas cigarras para producir la próxima generación.

El cambio climático también influyó en la distribución de las crías. A medida que las capas de hielo de América del Norte y los rsquos avanzaron y retrocedieron durante los últimos 20.000 años, los bosques caducifolios en los que habitan las cigarras se contrajeron y expandieron. Las crías evolucionaron en respuesta a esos ciclos de enfriamiento-calentamiento. Gene Kritsky de la Universidad Mount St. Joseph en Cincinnati, Ohio, señala como ejemplo a Brood X en la parte occidental de su estado. Hace veinte mil años, las capas de hielo se extendían justo al norte de donde se encuentra Cincinnati en la actualidad. Debido a que la tierra estaba cubierta de hielo, no había bosques y, por lo tanto, no había cigarras en el oeste de Ohio en ese entonces. Sin embargo, hace unos 14.000 años, la capa de hielo se retiró hacia el norte. "Llegaron los bosques y aparecieron cigarras periódicas con ellos", explica Kritsky. Ohio alberga otras tres crías de cigarras de 17 años, cada una de las cuales ocupa su propia región del estado. "La distribución en Ohio de las cigarras de 17 años coincide con las regiones fisiográficas creadas por las edades de hielo", observa.

Periodical cicadas have been able to adapt to climate change in part because they have some plasticity in their life-cycle length: they can accelerate or decelerate their emergence schedules by four-year increments. But this flexibility does not assure their long-term survival. Brood XI has been extinct since around 1954 others are waning. The main threat is habitat loss, according to Kritsky. In 1919 the U.S. Department of Agriculture predicted the demise of Brood X as a result of deforestation.

Mapping periodical cicada emergences helps scientists gauge how the broods are faring. Researchers have asked the public to report sightings for decades&mdashin the old days via postcard and later by phone and e-mail. Now they are crowdsourcing data with an app that Kritsky and his colleagues developed, called Cicada Safari, that allows people to submit pictures and videos of any cicadas they encounter and view a map of the Brood X emergence in real time as it unfolds. &ldquoIn 1902 the USDA based its map on just under 1,000 postcards it received,&rdquo Kritsky says. This year, through the app, &ldquowe&rsquore hoping to get 50,000 photographs.&rdquo A fitting send-off for the Brood X class of 2021.


WHAT RUSTLING INSECTS GIVE AWAY

Foraging in the dark is challenging, but not when you're equipped with echolocation. Plucking insects from the open air is simple for bats. But it's much trickier hunting at the forest edge. Detecting an insect amongst the barrage of reflections from the surroundings seems almost impossible. So how do echolocating bats locate tasty treats on the forest floor? Björn Siemers from the Max Plank Institute of Ornithology explains that some bats tune their acute hearing to the tiny rustling sounds made by insects. But how much of an effect does the material that an insect is clambering over have on the tell-tale sound it makes? And what could an approaching bat learn about its victim from its rustling? Siemers and his students, Holger Goerlitz and Stefan Greif, decided to measure sound volumes as insects scuttled across various natural surfaces to see how the landscape affects their acoustic trail( p. 2799 ).

Starting out in Germany, Siemers and Greif decided to measure the sounds made by insects as they wandered over three different surfaces a beech forest floor, a freshly mown meadow and newly ploughed earth. But the team needed to make their sensitive recordings in a completely silent environment, so they excavated 50 cm square chunks of each surface and transported them back to a soundproof room in the University of Tübingen to record the noises made by wandering carabid beetles. Equipped with exquisitely sensitive recording equipment, Greif waited patiently for the beetles to go about their everyday business, recording their tiny footsteps as they walked over each surface when dry and damp.

Analysing the recordings, Siemers found that the beetles were much nosier ambling through the beech leaf litter than the meadow or bare earth. And when he compared the sound generated by the dry surfaces with that from the same surfaces when damp, the volume doubled across all surfaces. The team also found that the rustling became significantly louder as the beetles walked faster.

But what effect did the beetles' size have on their rustling volumes?Siemers needed to find insects with a wide range of sizes and knew that the Madagascan rainforest is home to some of the most diverse populations of insects on the planet. Collecting beetles and cockroaches ranging in size from a few tens of milligrams up to 10 g, Siemers and Goerlitz recorded the sounds generated by the animals as they walked across dry leaf litter, bark or sand and found that the larger beetles made louder rustling noises. Also, the volume increase was more significant for larger creatures on noisy leaf litter than sand, with relatively small increases in the insects' size generating significantly larger sound volumes.

So what does all this mean for a ravenous bat hunting for a snack? Siemers explains that given the way sounds fade as you move further from their source,a beetle clambering over dry leaf litter could be heard eight times further away than another ambling over dry soil. He also suspects that an approaching bat could distinguish between a millipede and a six-legged beetle, but probably couldn't differentiate between a spider and a beetle. And if the bat knew a little about the nature of the surface beneath the insect, it might even be able to estimate its size, all crucial information for helping a bat to decide whether it's worth snatching that snack.


14 - The egg and embryology

Embryogenesis is the process by which a single egg develops into a multicellular individual. Many of our most important discoveries in understanding the embryonic development of animals, including humans, derive from studies that were first conducted in insects. Some of these discoveries are also now being applied in the fields of medicine and agriculture. As discussed in Chapters 12 and 13, all future offspring produced by insects derive from specialized progenitor cells called germ cells, which migrate to the gonads, where they differentiate into gametes. The gametes produced by females are called oocytes (eggs), while the gametes produced by males are called spermatozoa (sperm). Most insects begin their embryonic development when genetic material from an egg and sperm fuse through the process of fertilization to form a zygote. The zygote then divides mitotically to produce all of the different cells that comprise the body of the nymph (exopterygote/hemimetabolous species) or larva (endopterygote/holometabolous species), which will hatch from the egg. Embryogenesis proceeds through a similar series of steps in most insect species, but there are also a number of variations that in some cases are associated with unique life histories. In this chapter we first summarize key morphological and functional features of insect eggs (Section 14.1). Next we discuss the process of embryogenesis, including some of the molecular mechanisms that control axis formation and nutrient acquisition (Sections 14.2 and 14.3). We then consider sex determination (Section 14.4) and end the chapter by discussing parthenogenesis (Section 14.5), pedogenesis (Section 14.6) and other unique forms of embryonic development.

Most insects produce large eggs relative to their own size. This is due to a majority of insects packaging their eggs with large amounts of yolk, which serves as the source of nutrients for growth and development of the embryo. In general, the eggs of Endopterygota contain less yolk and are smaller than those of Exopterygota. To some extent this may reflect differences associated with ovariole type (Section 13.2.1). For example, in two locust (Orthoptera) species, which have panoistic ovarioles, each egg weighs about 0.5% of female weight among insects with telotrophic ovarioles, the egg of Trialeurodes vaporarium (Hemiptera) is over 1% of the female weight and that of Callosobruchus maculata (Coleoptera) 0.6%. By contrast, among insects with polytrophic ovarioles, comparable figures for Apis mellifera (Hymenoptera) and Grammia geneura (Lepidoptera) are 0.07% and 0.11%, respectively.


Resultados

Effect of temperature on biological parameters of D. indica

The results showed that temperature had a significant effect on the developmental time of different immature and adult stages, i.e., egg, 1st instar larvae, 2nd instar larvae, 3rd instar larvae, 4th instar larvae, 5th instar larvae, prepupa, pupa, adult, male adult, female adult, total developmental period of larvae, egg to adult emergence (developmental time), and egg to adult death (total). In the 1st, 2nd, and 5th larval instars, prepupae, and total larval period, developmental period increased slightly as temperature moved from 25 to 30஬, and then decreased at 35஬ ( Table 1 ). Our results are in agreement with the results of Peter and David (1992) . However, Kinjo and Arakaki (2002) found that the development of this pest slowed down at high temperatures, and the development time at 35஬ was significantly greater than 30஬. At 30஬, the developmental time from egg to adult emergence in this study (19.91 days) was close to the 18.2 days reported in a Japanese population of D. indica ( Kinjo and Arakaki 2002 ), and lower than the 23.4 days re- reported in an Indian population ( Peter and David 1992 ). The temperature for shortest developmental time in this study (35஬) was greater than the Japanese population (30஬) and lower than Indian population (40஬). The variation among these temperatures may be due to the effect of host plant on developmental time of D. indica.Ravi et al. (1998) studied the effect of several species of cucurbits on the development of D. indica , and Shin et al. (2002) investigated the effect of five different host plants (cucumber, pumpkin, watermelon, oriental melon, and melon) on the biological properties of this pest, and both concluded that the host type had a significant effect on development and reproduction of this pest. Differences in the developmental time of D. indica in different regions could also be attributed to geographical race, type of host, and laboratory conditions. Sex ratio increased proportionally with increases in tem- temperature from 20 to 35஬ and was greatest at 35஬, but the increase was not significant ( Table 1 ).

Tabla 1.

Mean (± SE) developmental period of Diaphania indica at four different temperatures.

Different letters in rows indicate a significant difference at the 5% level according to Duncan’s multiple range test. TDL = total developmental period of larva DT = developmental time (egg to adult emergence), T = total (egg to adult death).

Effect of temperature on mortality of various developmental stages of D. indica

The temperature did not have a significant effect on the mortality of immature stages, i.e., egg, 1st instar larvae, 2nd instar larvae, 3rd instar larvae, 4th instar larvae, 5th instar larvae, prepupa, and pupa ( Table 2 ). However, adult mortality was significantly affected by different temperatures. Maximum adult mortality was recorded at 30஬ ( Table 2 ).

Tabla 2.

Mean (± SE) mortality of Diaphania indica at four different temperatures.

Different letters in rows indicate a significant difference at the 5% level according to Duncan’s multiple range tests.

Thermal requirements for development of D. indica

The effect of different temperatures on the developmental rate of D. indica for all stages is shown in Table 3 . The observed pupal developmental time at 35ଌ was longer than predicted by the linear relationship between developmental rate and temperature. Thus, the data for this temperature were not included when the linear regression equation was used to obtain the lower temperature threshold and thermal constant. The results are in agreement with Shimizu (2000) , who reported that the lower temperature threshold and the thermal constant of egg to adult emergence of D. indica were 12.3஬ and 357.0 DD, respectively, on artificial diet. Kinjo and Arakaki (2002) recorded the highest lower temperature threshold for pupa (14.9஬) and the lowest lower temperature threshold for larvae (12.0஬) with thermal constants of 17.24 and 82.6 DD, respectively. In that study, the lower temperature threshold and the thermal constant for development of the egg to adult emergence were determined to be 13.5ଌ and 294.1 DD, respectively. In another investigation, the thermal constant and the lower temperature threshold of egg to adult emergence were determined to be 12.05஬ and 454.55 DD, respectively ( Peter and David 1992 ). Due to large climate changes between different regions of D. indica distribution, it is likely that the local populations or strains have adapted to these conditions. In conclusion, the results of our study suggest that 35஬, which was correlated with the lowest developmental time and the highest sex ratio, is the best temperature for rearing of D. indica en la región. These results will provide insight into improving pest control.

Tabla 3.

The lower developmental threshold (T0) and thermal constant K (DD) of Diaphania indica at four different temperatures.

DD = degree days DT = developmental time (egg to adult emergence), T = total (egg to adult death).


Coccinellidae

Coccinellidae ( / ˌ k ɒ k s ɪ ˈ n ɛ l ɪ ˌ d iː / ) [3] is a widespread family of small beetles ranging in size from 0.8 to 18 mm (0.03 to 0.71 in). [4] The family is commonly known as mariquitas in North America and mariquitas in Britain and other parts of the English-speaking world. Entomologists prefer the names ladybird beetles o mariquitas as these insects are not classified as true bugs. [5]

The majority of coccinellid species are generally considered beneficial insects, because many species prey on herbivorous hemipterans such as aphids or scale insects, which are agricultural pests. Many coccinellids lay their eggs directly in aphid and scale insect colonies in order to ensure their larvae have an immediate food source. [6] However, some species do have unwelcome effects among these, the most prominent are of the subfamily Epilachninae (which includes the Mexican bean beetle), which are herbivorous themselves. Usually, epilachnines are only minor agricultural pests, eating the leaves of grain, potatoes, beans, and various other crops, but their numbers can increase explosively in years when their natural enemies, such as parasitoid wasps that attack their eggs, are few. In such situations, they can do major crop damage. They occur in practically all the major crop-producing regions of temperate and tropical countries.


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